QUIMIOTERAPIA DE LA ENFERMEDAD DE CHAGAS

Andres O.M. Stoppani

Centro de Investigaciones Bioenergéticas, Facultad de Medicina - CONICET, Universidad de Buenos Aires

Key words: Chagas disease, Trypanosoma cruzi, Chemotherapy Nifurtimox, Benznidazole, Azols, Allopurinol, b-Lapachona, o-Naftoquinonas, Gossipol, Cruzipaina, Fenotiazinas, Tripanotiona reductasa.

Resumen

Se han ensayado numerosos fármacos para el tratamiento de la enfermedad de Chagas (tripanoso- miasis americana) pero, hasta ahora, ninguno ha resultado absolutamente eficaz. Esos fármacos se pueden clasificar en los siguientes grupos: a) tripanocidas eficaces in vitro y en el modelo murino, de uso clínico aceptado (Nifurtimox, Benznidazole); b) tripanocidas eficaces in vitro y en el modelo murino, de uso clínico discutible (azoles, Anfotericina B Allopurinol, Allopurinol ribosidos, primaquina); c) tripanocidas activos sobre el T. cruzi en el modelo murino y también in vitro: Alquillisofosfolípidos, 5-amino-imidazol-4-carboxamidas, bisbencilquinolinas, fenotiazinas, Gossipol e, inhibidores de la cruzipaína, d) tripanocidas in vitro: sin otra actividad documentada, actinomicina D, acridinas, Cristal Violeta (violeta de genciana), diterpenos (de Mikania sp), N,N’-dimetil-2-propen-1-amina, epoxidienetiol carbamato, fenazina metolsulfato, fenoxi-fenoxil fármacos, guanil hidrazonas, olivacina, piridin-azolato betainas, Proadifen, quelantes de Fe, o-naftoquinonas (b-lapachona), quinoides (miconidina, tingenona), sesquiterpeno (de Lychophora sp); sesquiterpeno lactonas, tetrahidrocarbazoles, DL-a-trifluorometilarginina, trifenilmetanos (colorantes). El Nifurtimox y el Benznidazole se caracterizan por (a) ser efectivos en la fase aguda de la infección chagásica pero no en la fase crónica; (b) la relación entre su acción y las cepas de T. cruzi infectante, que pueden ser susceptibles o resistentes al fármaco; (c) su acción genotóxica en bacterias; (d) producir efectos adversos (“no deseados”) en el paciente chagásico y producir daño celular en diferentes órganos de animales de experimentación (hígado, testículo, adrenales, placenta, etc.); (e) generar radicales libres del oxígeno, que aparentemente determinan la acción tripanocida y los efectos tóxicos. Los azoles inhiben la enzima esterol-C14 D24(25)-demetilasa, inhibición que previene la síntesis del ergosterol en tripanosomas. En el modelo murino, los azoles reducen la parasitemia y prolongan la sobrevida de los ratones infectados, pero no curan al paciente chagásico. El Allopurinol y sus derivados inhiben la síntesis de nucleótidos púrinicos y de DNA en el T. cruzi; suprimen la parasitemia y prolongan la sobrevida de los ratones infectados pero su efecto puede ser transitorio y no curan la infección humana. Los inhibidores de la cruzipaína son eficaces en las fases aguda y crónica de la infección chagásica en el ratón pero no se ha informado su eficacia en clínica. Las fenotiazinas actúan selectivamente sobre la tripanotiona reductasa, enzima específica de tripanosomatídeos, efecto que puede iniciar una quimioterapia racional de la enfermedad de Chagas. Las fenotiazinas reducen la parasitemia en el ratón pero falta información sobre una acción terapéutica en el hombre. Se analiza la metodología para el desarrollo de mejores fármacos para el tratamiento de la enfermedad de Chagas.

Abstract

The chemotherapy of Chagas disease. To date, Chagas disease has defied all attempts to develop an efficient and safe chemotherapy. Drugs effective on T. cruzi as trypanocidal agents may be classified as (a) drugs of extensive clinical use: Nifurtimox and Benznidazole; (b) drugs of restricted clinical use: azoles (e.g. Ketoconazole, Econazole; Miconazole); Amphotericin B; Allopurinol, Allopurinol ribosides and Primaquine; (d) drugs effective on T. cruzi and in experimental Chagas disease (murine model): alkyllysophospholipids; 5-amino-imidazole-4-carboxamides; bisbenzyl-isoquinolines; cruzipain (crucein) inhibitors; Gossipol; phenothiazines; d) drugs effective in vitro without other reported effects, acridines, actinomycin D, Crystal Violet (gentian violet), diterpenes (Mikania obtusata); N,N’-dimethyl-2-propen-1-amine, epoxidienthiol carbamates, Fe-chelators, guanyl hydrazones, o-naphthoquinones (b-lapachone); quinoids (miconidine; tingenone); Olivacine, phenazine methosulfate, phenoxi-phenoxyl drugs, Proadifen, pyridinium azolate betaines, sesquiterpenes (Lychophora sp), sesquiterpene lactones, tetrahydrocarbazoles, DL-a-trifluoromethylarginine, triphenylmetane dyes. It is generally agreed that Nifurtimox and Benznidazole (a) are effective on acute Chagas’disease, but may not be effective in the chronic phase; (b) their effect depends on the susceptibility of T. cruzi strains to the drug; (c) they produce adverse effects in patients that may prevent prolonged treatments; they are genotoxic and produce biochemical damage in the mammalian tissues. Redox-cycling of Nifurtimox and Benznidazolee generates “reactive oxygen species” which explain the biological effects. At variance with the mammalian host, T. cruzi is deficient in antioxidant enzymes which are essential to prevent oxidative damage. Azoles are effective inhibitors of T. cruzi growth in vitro and in vivo since they inhibit sterol C14-D24(25) demethylase, an enzyme catalysing ergosterol production. Azoles reduce parasitemia and extend the survival of infected mice but do not produce parasitological cure and their clinical effectiveness is questionable. Allopurinol allopurinol ribosides and related compounds inhibit T. cruzi hypoxantine-guanine ribosyl transferase, thus preventing the synthesis of adenylic and guanylic acids and also DNA. They reduce parasitemia and negativize xenodiagnosis but these effects may not be permanent, which invalidates their clinical use. Cysteine-protease inhibitors recognize T. cruzi protease (cruzipain, crucein) active site, thus allowing a covalent linkage with the inhibitor. These peptide inhibitors are effective in acute and chronic murine models. Phenothiazines inhibit trypanothione reductase and a specially favoured fit is a small 2-substitued 2-chloro and 2-trifluoromethyl with a remote hydrophobic patch. The essential phenotiazine nucleus can adopt more than one inhibitory orientation in its binding site. Phenothiazines are promising trypanocidal agents for the treatment of Chagas’disease. The methodology for developing new drugs for the treatment of Chagas’disease is discussed.

Dirección postal: Dr. Andrés O.M. Stoppani, Centro de Investigaciones Bioenergéticas, Facultad de Medicina (UBA-CONICET), Paraguay 2155, 1121, Buenos Aires, Argentina
Fax: (54-11)4508-3680 E-mail: stoppani@mail.retina.ar

La enfermedad de Chagas (tripanosomiasis americana) es una endemia que afecta a millones de personas lo que causa importantes problemas sanitarios, económicos y sociales para los países afectados. Se han propuesto dos alternativas para erradicar la endemia cha-gásica. La primera consiste en la prevención de la transmisión por eliminación del insecto vector (la vinchuca) y por esterilización de sangre portadora utilizada para transfusión. La segunda, consiste en la quimioterapia de los pacientes infectados, con fármacos absolutamente eficaces, eliminando así al reservorio humano del T. cruzi y al mismo tiempo, curando al paciente. Los procedimientos propuestos se complementan. Campañas de erradicación del vector se realizan desde hace varios años, con éxitos importantes pues en Uruguay, Chile y Brasil, la transmisión se ha reducido substancialmente1. Por el contrario, la cura parasitológica de los pacientes chagásicos, no ha tenido el mismo éxito. A pesar del tiempo transcurrido desde el descubrimiento de Chagas (1909), todavía no se dispone de una quimioterapia eficaz para todas las formas clínicas de la enfermedad. Se puede decir que el Trypanosoma cruzi, el agente causal, ha desafiado todos los intentos para su eliminación pues los medicamentos utilizados actualmente, el Nifurtimox (Lampit) y el Benznidazol (Radanil), son de relativa eficacia. Por otra parte, tampoco existen fármacos o vacunas para prevenir la enfermedad. Una información detallada que permite apreciar la evolución histórica del conocimiento sobre la quimioterapia de la enfermedad de Chagas se encuentra en las Referencias2-13.

A) Tripanocidas antichagásicos

Los fármacos ensayados como antichagásicos se pueden clasificar de la siguiente manera: a) fármacos con utilidad clínica reconocida: Nifurtimox y Benznidazole; b) fármacos efectivos en modelos experimentales in vivo, sin aplicación clínica generalizada: Ketoconazole, Itraconazole, Allopurinol, pirazol-pirimidinas, Anfotericina B; c) fármacos efectivos en modelos experimentales con utilidad clínica previsible: péptidos inhibidores de la cisteína-proteasa del T. cruzi (cruzipaina, cruceína); fenotiazinas; d) fármacos efectivos sobre el T. cruzi, en su medio de cultivo o en células de organismos huésped, in vitro: o-naftoquinonas y otros que se considerarán oportunamente; e) fármaco con acción tripanocida in vitro, utilizado para esterilizar sangre infectada; Cristal Violeta (Violeta de Genciana). A continuación se examina la problemática inherente a cada uno de esos medicamentos.

B) Nifurtimox y Benznidazole

El Nifurtimox (3-metil-N-[(5-nitro-2-furfuril) metilene]-4-tiomorfolinoamina-1,1-dioxido; (Fig. 1)14, y el Benzni- dazole (2-nitro-N-(fenilmetil)-1H-imidazol-1-acetamida; (Fig. 2)15, reemplazaron a otros nitrofuranos como la fura-dantina, la nitrofurazona y la furaltadona, menos activos como agentes tripanocidas2. Numerosos clínicos han utilizado al Nifurtimox y al Benznidazole desde su introducción en la terapéutica antichagásica hasta comienzos de la presente década (Tabla 1). Entre ellos se deben destacar a Cichero16, Lugones17, Cerisola18, Prata19 y Cançado20 por su acción pionera. A esa acción se agregaron otros meritorios investigadores21-23. En general, se acepta que el Nifurtimox y el Benznidazol son eficaces en la fase aguda de la infección chagásica pero lo son menos en la fase crónica pues a menudo, no producen cura parasitológica2, 3. Los efectos terapéuticos del Nifurtimox y del Benznidazole en la infección chagásica humana, presentan diferencias notables, lo que ha motivado controversias. Esas diferencias se explicarían, en parte por la existencia de cepas de T. cruzi con distinta susceptibilidad (o resistencia) a los fármacos, lo que constituye un problema biológico de gran interés. Por ejemplo, las cepas Tulahuen, Y y P son susceptibles al Nifurtimox mientras que las cepas Sonya y Colombiana no lo son24. Las diferentes respuestas del T. cruzi a los fármacos sugieren la existencia de diferencias mole-culares entre las varias cepas del parásito. Entre esas propiedades moleculares se encuentran las dependientes de las isoenzimas y de los marcadores genéticos. Andrade y col.25,26 y Murta y col.27 han efectuado un análisis comparativo de numerosas cepas de T. cruzi, utilizando como marcadores el zimodema constituído por alanina aminotransferasa, aspartato aminotransferasa, fosfo-glucomutasa y glucosa-6-P deshidrogenasa (Andrade) y el mismo zimodema, mas la “enzima málica”, el DNA amplificado (RAPD); sondas génicas para la glicoproteína F, la hipoxantina-guanina fosforibosil transferasa (HGPR); el gene del RNA ribosomico y el gene del mini-exon (MEX) (Murta). De los estudios de Andrade y col.25, 26 resultaron dos grupos de tripa-nosomas, uno susceptible y otro resistente al Benzni-dazole lo que permitió establecer una correlación con relevancia clínico-terapéutica. De las observaciones de Murta y col.27, sobre un mayor número de cepas, resultaron varios grupos según el marcador utilizado. Esos grupos respondieron a los quimioterápicos en forma característica para cada grupo. Parece oportuno sugerir, que la suceptibilidad/resistividad de la cepa infectante sea investigada antes de iniciar la quimioterapia. Para ello será necesaria la investigación molecular de las cepas infectantes en nuestro país. Se debe agregar que poblaciones silvestres de T. cruzi pueden contener, formas susceptibles y resistentes a los quimioterápicos antichagásicos, de manera que la destrucción de las formas susceptibles por los fármacos, lleva a la producción de formas resistentes28. Los epimastigotes resistentes transmiten esa propiedad a los amastigotes correspondientes29. De esta manera, la resistencia al fármaco se hace extensiva a todos los parásitos infectantes30, 31. En algunos organismos (Trichromonas, Giardia y Enta-meba), la resistencia a los nitroimidazoles se explica por una deficiencia en enzimas reductoras del grupo nitro, por ejemplo, la piruvato-ferredoxina oxido-reductasa. No existen estudios similares en el T. cruzi.
Otro motivo de incertidumbre en la determinación de efectividad de las drogas antichagásica lo constituye la definición del criterio de “curación”. En la mayoría de los trabajos realizados antes de 1994, la negatividad del xenodiagnóstico fue criterio valedero. También se utilizaron y/o se utilizan la observación hematológica, el hemocultivo y las pruebas biológicas (inmunofluo-rescencia). Estudios mas recientes utilizando técnicas de Biología Molecular (PCR) para detectar fragmentos de DNA o RNA en sangre de pacientes chagásicos ha demostrado la positividad de esas reacciones en casos con xenodiagnóstico negativo o sea que, a pesar de la ausencia de tripomastigotes en sangre circulante, existirían amastigotes en los tejidos de esos pacientes. Ello significaría que, de atenerse a los métodos tradicionales, la efectividad del medicamento antichagásico estaría sobrevalorada.
Tanto el Nifurtimox como el Benznidazole producen efectos adversos (“no deseados”) en pacientes tratados con esos fármacos, mas con el primero que con el segundo32, 33. Las manifestaciones tóxicas pueden incluir temblores, náuseas, vómitos, pérdida de peso, polineu-patías, eritema, etc., según el fármaco utilizado32. Revisiones exhaustivas de los efectos adversos del Nifurtimox y el Benznidazole se reseñan en las Referencias2, 3, 33. Esos efectos conspiran contra la aceptación de los nitro-fármacos por el paciente chagásico. La toxicidad de esos fármacos se ha confirmado en modelos experimentales. Asi, se han comprobado acciones genotóxicas en Salmonellas34-36, que correlacionan con la actividad tripanocida in vitro. Por otra parte, tanto el Nifurtimox como el Benznidazole producen radicales o moléculas citotóxicas en los tejidos de animales de experimentación37-43 y presumiblemente en el hombre. Entre esos efectos se pueden mencionar a) la oxidación del glutatión (GSH) en el hígado44, 45; b) aumento en la producción de lipoperóxidos46-48; c) daño bioquímico y/o histológico del testículo, las adrenales, el ovario y la placenta de la rata49-52; d) modificación del DNA tisular53. El nifurtimox y el Benzmidazole pueden producir alteraciones neuroló-gicas54, 55, efectos clastogénicos en los niños56 y linfomas en la rata57. Estos efectos adversos no son compatibles con tratamientos prolongados con esos fármacos.

Mecanismo de acción

El Nifurtimox y el Benznidazole, actúan sobre el genoma del T. cruzi. Ambos inhiben la síntesis de DNA, del RNA y de las proteínas58-61. También aceleran la degradación de esas macromoléculas. El aislamiento del DNA nuclear o cinetoplasto de tripanosomas incubados con Nifurtimox o Benznidazole permite comprobar roturas (“strand-breaks”) en las cadenas nucleotídicas del DNA. La Figura 3 muestra el efecto del Nifurtimox sobre la estructura del DNA del T. cruzi. En ese experimento, epimastigotes marcados con timidina tritiada se incubaron con Nifurtimox a la concentración indicada en la figura. Terminada la incubación, se extrajo el DNA celular se lo sometió a electroforesis y se determinó la radiactividad de las fracciones aisladas. El DNA proveniente de los epimastigotes incubados con Nifurtimox originó un pico de altura proporcional a la concentración de Nifurtimox, pico que no se observó en el DNA testigo. La rotura del DNA representó al daño causado por el Nifurtimox y/o sus productos metabólicos citotóxicos62 entre ellos, los radicales libres del oxígeno63. La modificación del DNA también podría representar a la inhibición de las enzimas encargadas de mantener la integridad del DNA, como las topoisomerasas64. La existencia de mecanismos reparadores fisiológicos del DNA dañado se probó eliminando al Nifurtimox del medio de incubación (Figura 3; experimento B) y reincubando los epimastigotes en medio normal sin droga. En esas condiciones, no se observó el pico indicador de la fragmentación del DNA.
El Nifurtimox y el Benznidazole pueden ejercer su toxicidad por varios mecanismos a saber: (a) acción directa del radical nitroanión47, 65-70 sobre moléculas susceptibles, entre ellas el DNA; (b) generación de radicales libres del oxígeno, que con el Nifurtimox sería el agente citotóxi- co principal7, 63, 70-72 y (c) producción, por reducción de moléculas reactivas (los derivados nitroso e hidroxilami-na) cuya citotoxicidad es conocida; d) inhibición directa de la enzima73. La reducción univalente de los nitrocom-puestos implica las reacciones siguientes: (1) captura del electrón por el grupo nitro, que se convierte en radical nitro anión (Reacción 1); en esta reacción el NADPH es el dador de electrones; (2) producción del radical anión superóxido, por oxidación del radical nitroanión (Reacción 2); (3) el radical anión superóxido dismuta, gene-

RNO2 + NADPH > R.NO2l + NADP+ + H+ [1]
ArNO2— + O2 > ArNO2— + O2— [2]
O2— + O2— + 2H+ > H2O2 + O2 [3]
O2— + H2O2 Fe(II) > O2 + OHl + OH— [4]
R.NO2— + R.NO2— + 2H+ > R.NO2 + R.NO + H2O [5]
R.NO + 2NAD(P)H > R.NHOH + 2NAD(P)+ [6]
R.NHOH + 2NAD(P)H > R.NH2 + NAD(P)+ + H2O [7]

rando peróxido de hidrógeno, reacción catalizada por la superóxido dismutasa (Reacción 3); (4) el anión superóxido y el peróxido de hidrógeno, en presencia de Fe(II), reaccionan formando radical hidroxilo (OHl), muy tóxico (Reacción 4). Esta serie de reacciones requiere la intervención de varias enzimas, en primer término (Reacción 1) flavoproteínas como la NADPH citocromo P450 reductasa, la dihidrolipoamida deshidrogenasa mitocondrial71, 72, que actúan como “nitro reductasas”. La Reacción 3 es catalizada por la superóxido dismutasa. Las Reacciones 6 y 7 también dependen de nitrore-ductasas68,69. Se debe notar que la velocidad de la Reacción 2 está limitada por la concentración del oxígeno en el medio. Si esta es alta, como ocurre con sistemas operando en condiciones aeróbicas, la producción de “especies reactivas” del oxígeno transcurre según las Reacciones 2-4. En cambio, si la tensión de oxígeno es baja, como ocurre en la profundidad de los tejidos en condiciones fisiológicas, la Reacción 2 es relativamente lenta lo que favorece la dismutación del radical nitroanión (Reacción 5) generando asi al nitroso-derivado. El nitrosofurano, en presencia de un sistema reductor forma la hidroxilamina correspondiente (R.NHOH; Reacción 6). Por último, una reducción similar lleva a la producción del amino derivado (R.NH2; Reacción 7). Reacciones similares ocurren con los nitroimidazoles, representados por el Benznidazole66,69. Los nitroso e hidroxilamino derivados de los nitrofuranos o nitroimi-dazoles son conocidos por su toxicidad. Las Reacciones 1-7 pueden ocurrir tanto en el T. cruzi como en el organismo huésped, lo que explicaría la toxicidad de los nitroderivados para ambos. Sin embargo, el T. cruzi es un organismo deficientes en enzimas antioxidantes, por ejemplo, catalasa y superóxido dismutasa74,75, lo que no ocurre con el huésped70-73. Esta diferencia determina un mayor efecto de los fármacos en el parásito. Los productos de la reducción de los nitroimidazoles, tanto el radical nitroanión como los derivados nitroso e hidroxilamina, pueden reaccionar con el DNA formando aductos77 que facilitan la rotura de las cadenas nucleotoides. Esos efectos se sumarían a los del superóxido y del radical hidroxilo.

Relación estructura/actividad

La molécula del Nifurtimox está constituída por dos grupos, el nitrofurano y la tetrahidromorfolina (Figura 1). El primero es el que interviene en la reacción redox para formar el nitroanión, precursor inmediato de los radicales libres del oxígeno. El grupo tetrahidromorfolina ejerce una función moduladora esencial de esa actividad78 por medio de la distribución de electrones en la molécula. Se han sintetizado numerosos análogos del Nifur-timox79-82 en los cuales se reemplazó la tetrahidromor-folina por heterociclos aromáticos (pirrol, imidazol, triazol, indol) y también por grupos alifáticos83, 84. La mayoría de los nuevos derivados fueron mas activos que el Nifurtimox como generadores de radicales libres85, 86 pero también serían mas mutagénicos que el Nifurtimox36, lo que desaconseja su uso terapéutico. Cuando los nuevos nitrofuranos se ensayaron sobre la parasitemia de ratones inoculados con T. cruzi, esos nitrofuranos fueron menos eficaces que el Nifurtimox y con algunos de ellos la parasitemia aumentó78 lo que significaría que esos fármacos podrían producir efectos inmunosupre-sores.
En resumen, numerosas investigaciones en Argentina, Brasil, Chile y otros países han llevado a aceptar el uso de los nitrocompuestos en la forma aguda de la enfermedad de Chagas, con importantes reservas sobre su uso en la forma crónica. La producción de efectos adversos (“no deseados”) y la existencia de cepas de T. cruzi resistentes al Nifurtimox y el Benznidazole imponen la necesidad de desarrollar nuevos fármacos que los reemplacen.

C) Azoles

Los azoles constituyen un conjunto de fármacos caracterizados por poseer un heterociclo nitrogenado (imidazol; triazol, etc) en su estructura (Figuras 4 y 5). Son fungistáticos, frecuentemente utilizados para el tratamiento de candidiasis y otras micosis. En 1964 Abitbol y col.87 obtuvieron resultados positivos con la Anfotericina B en pacientes chagásicos de los cuales 4 negativizaron el xenodiagnóstico. Sin embargo, el tratamiento de la enfermedad de Chagas con Anfotericina B no se repitió, posiblemente por la toxicidad de ese micostático. En 1981 Docampo y col.88 comprobaron que el Miconazole (Figura 4) y el Econazole inhiben el crecimiento del T. cruzi in vitro y modifican su contenido en esteroles, en particular de ergosterol, un esterol vegetal cuya presencia en el T. cruzi es notable. LaTabla 2 resume, los resultados obtenidos con los azoles, especialmente con Ketoconazole. La mayor parte de esos estudios se realizaron in vitro e in vivo, utilizando el modelo murino de la enfermedad de Chagas. La acción antiparasitaria se manifestó en todos los ensayos89-94. La asociación del Ketoconazole con la Terbinafina o con la lovastatina, inhibidores de la síntesis de esteroles, resultó eficaz in vivo obteniéndose suma de efectos en un número importante de observaciones. Los azoles modifican el metabolismo de los esteroles en el T. cruzi, inhibiendo la enzima C14 D24(25)-esterol metil transferasa98. Como consecuencia de esa inhibición, no se forma ergosterol lo que altera la permeabilidad de las membranas del tripanosoma92,98. La Anfotericina B96 y la sinefungina97 producen in vitro efectos similares. Contrariamente a los resultados experimentales, el ensayo en pacientes chagásicos del Ketoconazole mas Lovastatina95 o del Itraconazole mas Allopurinol99, no dio resultados convincentes. Mas recientemente han aparecido los bis-triazoles antichagásicos, el ICI-195739 y su enantiomero D-0870100,101. Como antichagásicos, estos fármacos son mas activos que la sinefungina, pero será necesario esperar los ensayos complementarios para establecer su utilidad clínica.
En resumen, si bien algunos azoles como el Econa-zole, el Ketoconazole y el itraconazol, son parcialmente eficaces como antichagásicos, el éxito de la quimioterapia de la enfermedad de Chagas con azoles está supeditado a los resultados que se obtengan con los nuevos bis-triazoles.

D) Allopurinol y pirazol pirimidinas

El T. cruzi es un organismo incapaz de sintetizar purinas (adenina; guanina), pero es capaz de sintetizar pirimi-dinas (timina; citosina y ciracilo). La importación de bases púricas por el T. cruzi depende de un transporte específico en el que participan quinasas. Por lo tanto, para sintetizar los nucleótidos que constituyen el DNA y el RNA, el T. cruzi debe utilizar purinas pre-formadas por el organismo huésped102,103, de manera que, la síntesis de nucleosidos y nucleótidos por el parásito es un buen blanco terapéutico104. El T. cruzi utiliza la adenina, y la hipoxantina para sintetizar acido adenilico (AMP) mientras que la guanina y la xantina son utilizadas para sintetizar acido guanilico (GMP). La conversión de la xantina y la hipoxantina en las bases aminadas depende de enzimas específicas que utilizan al adenil succinato como dador del grupo anión105. Esas enzimas podrían también constituir blancos terapéuticos. Por otra parte, la síntesis de los nucleótidos púricos es catalizada por la hipoxantina-fosforibosil transferasa y enzimas similares que, pueden utilizar también sustratos no-fisiológicos, por ejemplo, el Allopurinol (4-hidroxi-pirazol-(3,4d)-pirimidina) y otras pirazol pirimidinas. Como consecuencia de esas reacciones se forman nucleosidos y nucleotidos no-fisiológicos, que son tóxicos para el parásitos pues inhiben la síntesis de los nucleótidos fisiológicos y por consiguiente, la del DNA y el RNA. Esas inhibiciones tienen consecuencias farmacológicas, que se expresan como inhibición de la multiplicación in vitro, la reducción de la parasitemia y la prolongación de la sobrevida de los ratones infectados según el modelo murino. La Tabla 3 resume los estudios realizados con Allopurinol y otras pirazol-pirimidinas, cuyas referencias106-123 incluyen la acción tripanostática (o tripanocida) de esos fármacos. La administración oral de los nucleó-tidos del Allopurinol o de las pirimidinas análogas también disminuye la parasitemia de ratones infectados pero no produce cura parasitológica. La acción tripanocida varía según la estructura de la base nitrogenada. La síntesis de nucleosidos o nucleótidos artificiales con diferentes pirimidinas, entre ellos 3'-azido-3'-deoxitimidina, (conocido como Zidovudina) produce nucleótidos con acción terapéutica antichagásica. El ensayo de 59 análogos de la purina como inhibidores de la hipoxantina-ribosil transferasa permitió sintetizar 8 moléculas con gran afinidad por la transferasa123, estructuras caracterizadas por los grupos sustituyentes en las posiciones 6 y 8 de la purina. El Nifurtimox y el Benznidazole inhiben el transporte de purinas a través de las membranas celulares, lo que puede contribuir a la acción terapéutica120.
El Allopurinol y sus derivados han sido ensayados para el tratamiento de las diferentes formas clínicas de la enfermedad de Chagas122. Para obtener efectos notables se requieren dosis relativamente altas de Allopurinol lo que puede producir intolerancia. El tratamiento reduce la parasitemia en forma que puede ser total y también negativiza el xenodiagnósticos121. Sin embargo, esos efectos suelen ser transitorios y al cabo de cierto tiempo, la sintomatología reaparece. Según Storino y col.3, el uso clínico de las purinas requiere respuestas adecuadas a varios interrogantes, a saber: (1) ¿son tripanocidas o tripanostáticos?; (2) ¿cuál es la dosis eficaz y la duración del tratamiento?; (3) ¿en que momentos del tratamiento se negativizan o se re-positivizan las reacciones serológicas?; (4) ¿que importancia tienen las cepas de T. cruzi resistentes al Allopurinol y análogos?
En resumen, el conocimiento del metabolismo de las purinas en T. cruzi ha permitido proponer nuevos fármacos para el tratamiento de la enfermedad de Chagas. Sin embargo, hasta ahora no se ha logrado una purina o pirimidina como fármaco eficaz para la cura parasitológica de la enfermedad. Nuevos estudios sobre los mecanismos metabólicos del parásito parecen ser necesarios.

E) Inhibidores de cisteína proteasas (cruzipaina, cruzaina)

El T. cruzi se caracteriza por poseer una cisteína-proteasa, la cruzipaina (GP59/51) que constituye una fracción importante de las proteínas celulares124. La enzima se asemeja a la papaina y tiene 35-45% de homología con una catepsina I. La Tabla 4 reseña estudios recientes sobre la cruzipaína y sus inhibidores125-129-. La cruzipaína se encuentra en todas las formas del parásito, tiene función metabólica esencial y es necesaria para la transformación de amastigotes en tripomas-tigotes. Además intervendría en la penetración de los tripomastigotes en las células del huésped126,127. La estructura de la cruzipaina y de su gene la califican como blanco para posibles quimioterápicos126 especialmente, por la reactividad del tiol de la cisteína, susceptible a inhibidores específicos (diazometano y fluorometil acetona)128. Péptidos sintéticos o seudopéptidos ligados a grupos diazo o cetona forman una unión estable con el tiol en el centro activo de la enzima. Cuando la estructura peptídica del inhibidor satisface la especificidad molecular del centro activo de la cruzipaina, se forma un compuesto covalente cruzipaína-inhibidor, catalitica-mente inactivo. Estudios con varios péptidos sintéticos han demostrado que los inhibidores mas potentes son aquellos que poseen grupos hidrofóbicos voluminosos en la posición P1 (primer residuo vecino al diazometano) y un residuo aromático próximo. Los parásitos afectados por esos inhibidores muestran la membrana plasmática rota, mitocondrias hinchadas y cromatina desorganizada. Los efectos citotóxicos de los péptidos inhibidores de la cruzipaina en amastigotes cultivados129 también se observan in vivo, en el modelo murino130. Seudopéptidos constituídos por fenilalanina y homofe-nilalanina, ligados a fluorometilacetona, previenen la muerte de ratones infectados con una dosis letal de T. cruzi. Algunos ratones son curados parasitológicamente mientras que otros pasan al Chagas crónico. Es llamativo que estos últimos ratones tratados nuevamente con el seudopéptido también curan. Amastigotes aislados del corazón de los ratones chagásicos tratados con el seudopéptido presentaron las mismas alteraciones estructurales que los amastigotes aislados de T. cruzi in vitro. En cambio, los péptidos no producen patologías en el huésped animal. Se puede ver que los péptidos inhibidores de la cruzipaina perturban la capacidad del T. cruzi para invadir miofibras y bloquean la multiplicación de los amastigotes intracelulares.
En resumen, la obtención de péptidos inhibidores de la cisteína-proteasa constituye un avance significativo para la quimioterapia de la enfermedad de Chagas por la capacidad de esos péptidos (o seudopéptidos) para curar el Chagas crónico y por su inocuidad para el organismo huésped. Esos péptidos podrían constituir el fármaco de elección para el tratamiento de todas las formas de la enfermedad.

F) Gossipol

El Gossipol es un polifenol dialdehido extraído de las semillas de algodón que se ha utilizado como inhibidor reversible de la espermatogénesis, para controlar la fertilidad. Tiene otras acciones, a saber: a) es genotóxico y produce alteraciones en el DNA atribuidas a la producción de radicales libres del oxígeno131; b) modifica la actividad mitocondrial en levaduras y células de mamíferos132; c) inhibe la flavoproteína ribosido reductasa que tiene función esencial en la formación de desoxi-ribonucleótidos para la síntesis del DNA133. Blanco y col.134-139 han estudiado la acción tripanocida del Gossipol en T. cruzi comprobando la inhibición de deshidrogenasas del parásito (a-hidroxiacido, L-glutamato y glucosa-6-P deshidrogenasa) y de la enzima “málica”. En ratones infectados con T. cruzi, el Gossipol reduce la parasitemia y prolonga la sobrevida pero no produce la curación parasitológica139. Estas observaciones sugieren la conveniencia de ensayar otros polifenoles, mas activos y específicos que el Gossipol, como antichagásicos.

G) o-Naftoquinonas

Las o-naftoquinonas constituyen un grupo de sustancias con múltiples aplicaciones en medicina. La ß-la-pachona es una o-naftoquinona extraída de la corteza del lapacho140 con acción inhibidora efectiva sobre el crecimiento de tripanosomas (incluso el T. cruzi), fibroblastos y varias especies de células tumorales140-145. Schaffner-Sabba y col.146 sintetizaron una serie de o-naftoquinonas con estructura similar a la b-lapachona (quinonas CG), que resultaron inhibidoras de la multiplicación de células tumorales y también antivirales. Una característica metabólica de la b-lapachona y sus análogos es su capacidad para participar en reacciones redox y generar radicales libres del oxígeno143,147-149. En las reacciones subsiguientes se forma la dihidro-b-lapachona (hidro-quinona). Para iniciar estas reacciones se requiere un dador de electrones (NADPH) y el catalizador correspondiente que puede ser la NADPH-citocromo P450 reductasa microsomal. El anión superóxido formado como consecuencia del ciclo redox de la o-naftoquinona origina la producción de H 2O2 y del radical hidroxilo (Reacciones 3 y 4) y a este último se puede atribuir la citotoxicidad de las naftoquinonas5, 7. Cuando se transfieren dos electrones como en la reacción catalizada por la DT-diaforasa, el producto inmediato es la hidroquinona, una molécula relativamente estable y por lo tanto de baja toxicidad. Otro grupo de o-naftoquinona similares a la b-lapachona los constituyen las mansononas extraídas de la corteza de un árbol africano Mansonia altissima. Estas quinonas tienen propiedades similares a la b-la-pachona, pues generan “especies reactivas” del oxígeno por ciclo redox y son citotóxicas150. Una diferencia importante entre las reacciones catalizadas por la NADPH-citocromo P450-reductasa y por la DT-diaforasa está determinada por el producto de la reducción de la quinona. Cuando se transfiere un electrón (por la reductasa), se forma la semiquinona, muy reactiva. En cambio, cuando se transfieren dos eletrones (por la diaforasa) se forma la hidroquinona, relativamente estable. La reacción de la diaforasa tiene lugar en el hígado y constituye un mecanismo de desintoxicación muy eficaz de las o-naftoquinonas, pues las hidroquinonas pueden formar conjugados fácilmente eliminables.
La b-lapachona y varios otros compuestos quinoi-des151,152 son potentes inhibidores del crecimiento in vitro de tripanosomatideos, como el T. cruzi, C. fasciculata y Leptomonas seymouri141,146. La Figura 6 ilustra la acción de la quinona CG 8-935 sobre la multiplicación del T. cruzi en su medio de cultivo. Esa acción concuerda con la inhibición de la síntesis del DNA, el RNA y de las proteínas del parásito151,153, como lo muestra la disminución de la incorporación de los correspondientes precursores tritiados. Otros efectos característicos de la b-lapachona, son la degradación del DNA, RNA y proteínas celulares150-151, detectada por la disminución de la radiactividad de esas macromoléculas previamente marcadas con precursores tritiados (Figura 7).
El efecto inhibidor del crecimiento del T. cruzi por las o-naftoquinonas se obtiene con concentraciones relativamente bajas de quinona (Figuras 6 y 7) lo que facilitaría una posible aplicación terapéutica de las mismas dado que la concentración de b-lapachona de 100 µM sería tolerables para el hombre. Sin embargo, no existen datos que demuestran una acción de las o-naftoquinonas in vivo. Esta falencia se podría explicar por la aludida reducción de las o-naftoquinonas a hidroquinona por la DT-diaforasa del huésped lo que determinaría una rápida disminución de la concentración de quinona en la sangre y los tejidos, a niveles no adecuados para una terapia tripanocida. Esa reacción contrarestaría posibles efectos tóxicos, resultantes de la reducción univalente de las o-naftoquinonas por los mecanismos hepáticos generadora de radicales libres154-155.
La investigación de la acción tripanocida de las o-naftoquinonas, si bien no ha tenido consecuencias inmediatas para el tratamiento de la enfermedad de Chagas, ha generado interés en la actividad de esas quinonas como citostáticos, para el tratamiento de tumores156-162. Este resultado inesperado, cualquiera sea su aplicación ulterior, justifica plenamente las investigaciones sobre la acción de las o-naftoquinonas en tripanosomatideos.

H) Actividad tripanocida de moléculas orgánicas y productos naturales

La necesidad de desarrollar nuevos fármacos para el tratamiento de la enfermedad de Chagas impulsó la investigación de un número importante de presuntos agentes tripanocidas, cuyos resultados no han trascendido a la prueba clínica. Algunos de esos ensayos se realizaron utilizando el modelo murino de la enfermedad pero la mayoría de ellos se realizó sobre tripanosomas in vitro. A continuación, se reseñan los resultados de esas investigaciones, a las que se hace referencia por el nombre de la molécula utilizada. Dada su heterogeneidad, esas estructuras se ordenan por el año de publicación de los resultados correspondientes. Llama la atención que muchos presuntos tripanocidas han sido estudiados en los últimos diez años lo que manifiesta un significativo interés por desarrollar una nueva quimioterapia de la enfermedad de Chagas. La falta de información sobre los mecanismos moleculares de esas acción sugiere interesantes líneas de investigación que correspondería aprovechar, por la información que se obtendría para el desarrollo de nuevos fármacos anticha-gásicos y también para un mejor conocimiento de la bioquímica del T. cruzi.

Moléculas activas en el modelo murino

Verapamil (1989): previene la resistencia de los epimastigotes al Nifurtimox163. Verapamil (1989 y 1996): revierte la resistencia al Nifurtimox durante el Chagas agudo y mejora la evolución del Chagas crónico164,165. Bencil-5-aminoimidazol-4-carboxamidas (1991): los derivados mas activos son la 1-(4-clorobencil) y el 1-(3,4-diclorobencil)-5-aminoimidazol-4-carboxamidas. Reducen la parasitemia durante la fase aguda de la infección chagásica. Algunos análogos son mas activos que el Nifurtimox166. Alquillisofosfolípidos (1996): suprimen la parasitemia del ratón infectado; actúan in vitro sobre epimastigotes en macrófagos a concentración de 0.2-5 µM167. Primaquina y análogos (1996): reducen la parasitemia del ratón infectado. Algunos de los derivados son mas activos que la Primaquina misma y el Nifurtimox168. Bisbencilisoquinolinas (1997): los alcaloides curina y cycleanina negativizan la parasitemia y prolongan la sobrevida de ratones inoculados con cepas Y (insensible al Benznidazole) o CL de T. cruzi; bloquean los canales del Ca169. 8-Aminoquinolinas (1997): algunos derivados reducen la parasitemia de ratones durante la fase aguda de la infección chagásica; el grupo sustituyente en la posición 8 es crítico para la actividad de las 8-aminoquinolinas; son activas por vía oral170. Protriptilina (1997): la N-metil-5H-dibenzocicloheptene-5-propamina; reduce la parasitemia del ratón infectado; es tres veces mas activas que el Nifurtimox y podría actuar como inhibidor de la tripanotiona reductasa171. Nitrobenzofuranos (1998): reducen la parasitemia en el ratón infectado; algunos compuestos son mas activos que el Nifurtimox172.

Moléculas activas in vitro (sin información sobre otras actividades)

Fenantridina (carbidium) (1966): inhibe la multiplicación del T. cruzi; es menos activo que el Nifurtimox173. Bromuro de etidio (1978): inhibe la síntesis de DNA cinetoplástico (mitocondrial)174. Fenazina metosulfato (1978): inhibe la multiplicación del T. cruzi y produce superóxido175. Olivacina (pirido-carbazol)(1978): inhibe la síntesis de macromoléculas en epimastigotes; altera la respiración y la ultraestructura del T. cruzi.176. Complejos de Rh (III) y Pt (II) (1986): inhiben el crecimiento del T. cruzi177. Primaquina y análogos (1986): estimulan la respiración y la producción de radical hidroxilo por fracciones del T. cruzi; tienen actividad similar al Nifurtimox178. Tetrahi-drocarbazoles (1987): inhiben la multiplicación del T. cruzi en medio de cultivos179; pueden reemplazar al Cristal Violeta para esterilizar muestras de sangre. t-Butil-4-hidroxianisol (1988): los antioxidantes fenotóxicos son activos sobre T. cruzi y sobre células tumorales180. Acridinas (1988): 9-amino- 9-oxo- y 9-tioacridinas inhiben la síntesis de DNA, RNA y proteínas en T. cruzi in vitro; disminuyen la parasitosis en la células HELA181. Derivados del Trifenilmetano (1988): el derivado 2-benzotienil-bis-1,4-dimetilaminofenil es el mas activo, con CI50 de 1.0 o 2 ng/ml para la inhibición de la multiplicación y de la síntesis de DNA, respectivamente182. Piridinio azolato betainas (1990): inhiben la multiplicación del T. cruzi; algunos son mas activos que el Nifurtimox183. Actino-micina D (1991): inhibe la multiplicación del T. cruzi en macrófagos, la síntesis del DNA y la penetración de los tripomastigotes en células del huésped184. Thiadiazinas (1992): son activas sobre amastigotes de T. cruzi y Trichomonas185. DL-a-difluorometilarginina (1992): inhibe la multiplicación intracelular del T. cruzi pero no inhibe la transformación de tripo- en amastigote; inhibe específicamente la arginina decarboxilasa y disminuye la infectividad del T. cruzi en el ratón186. Sesquiterapeno lactonas (guanolides) (1993): la dehidrozaluzanina C inhibe la multiplicación del T. cruzi en concentraciones de 2.5 a 50 mg/ml187. Ajoeno (1993): producto natural aislado del ajo, inhibe la síntesis de fosfolípidos y la proliferación del T. cruzi188. Bisbencilisoquinolinas y quinonas (1994): los alcaloides, dafnandrina, dafnolina, isocoden-drina, girocarpina, limacína y feantina, en concentración de 250 ng/ml lisan los tripomastigotes de T. cruzi189. Guanil hidrazonas (1995): inhiben la multiplicación del T. cruzi in vitro; las mas activas no ligan protones y tienen sustituyentes en posición orto; algunas son mas activas que el Cristal Violeta190. Diterpenos de Mikania obtusata (1995): inhiben la multiplicación del T. cruzi; son responsables de la acción de los extractos de Mikania191. Quelantes (1995): los complejantes de los Cu(II) y Fe(II) representado por Dietilamino-N-carbo-diiamida-piperidina-N-carboditioato (5 mg/ml) inhiben 50-70% el crecimiento del T. cruzi; algunos son mas activos que el Benznidazole192. Psoralen (1996): bajo luz ultravioleta inactiva al T. cruzi en muestras de sangre; útil para esterilizar sangre para transfusiones193. Epoxi-dien-tiolcarbonato y fenoxifenoxietil tetrahidropiranil eter (1996): inhibe la multiplicación del T. cruzi en macró-fagos194. Sesquiterpenos de Lychnophora sp (1996): las lactonas goyazenolido, eremantholido, lychnofolidos y el ácido lychnorfico inhiben la multiplicación del T. cruzi; la actividad es igual o superior a la del Violeta de Genciana195. N,N-dimetil-2-propen-1-aminas (1996): inhiben la multiplicación del T. cruzi; a concentración: 10-60 mM (con epimastigotes) y 40-220 µM (con tripomastigotes)196. Fenoxifenoxil-aldehido isoprenoides (Fenoxicarb) (1997): inhiben la multiplicación del T. cruzi; IC50 de los compuestos (mas activos) 66 y 78 µM, respectivamente197. Anilinoacridinas (1997): la inhibición del crecimiento de T. cruzi depende de la estructura198. Benzamidinas (1997): inhiben el crecimiento de T. cruzi y Leishmanias199. Proadifen (1998): inhibe la motilidad de los epimastigotes y su multiplicación en células Vero; activas sobre tripo- y amastigotes; D50 50-250 nM; actividad variable según la cepa200 de T. cruzi200 .

I) Tripanotiona y tripanotiona reductasa: perspectivas terapéuticas

Una característica bioquímica de los tripanosomatideos, en particular, del T. cruzi es la presencia de tripanotiona (N1, N8-bis (glutationil) espermidina; Figura 8)201. En esos organismos la tripanotiona cumple funciones similares a las del glutatión en el organismo huésped, pues interviene en reacciones redox dependientes de NADPH

NADPH + H+ + T(S)2 > NADP+ + T (SH)2 [8]
T(SH)2 + H2O2 > T(S2) + 2H2O2 [9]

(Reacción 8) donde T(S2) y T(SH2) son las formas disulfuro y dihidro de la tripanotiona, respectivamente (Figura 8). La Reacción 8 es catalizada por la flavoenzima tripanotiona reductasa, enzima que ha sido aislada, purificada, cristalizada y cuya estructura se ha determinado por cristalografía de rayos X202-205. Asociada a la tripanotiona peroxidasa (reacción 9) constituye un eficaz sistema desintoxicante de hidroperóxidos en tripa-nosomatideos205. La Figura 9 ilustra la operación del sistema tripanotiona reductasa/tripanotiona peroxidasa. La tripanotiona tiene importantes funciones en los tripa-nosomas y las leishmanias, a saber (a) asociada a las enzimas tripanotiona reductasa y tripanotiona peroxidasa, es un factor esencial para el mantenimiento de la homoestasis intracelular de los tioles206; (b) contribuye a la estructura de proteínas dependientes de grupos disulfuro; (c) actúa como antioxidante frente a radicales libres del oxígeno, a los peróxidos y los hidroperóxidos; (d) interviene en la desintoxicación de xenobióticos, como sustrato de la tripanotiona-S-transferasa; (e) compleja metales pesados, ejerciendo una acción antitóxica; (f) contribuye al mantenimiento del nivel fisiológico de las poliaminas, al utilizarlas como su constituyentes o liberarlas por hidrólisis de la N-glutationil espermidina.
La presencia de tripanotiona reductasa en el T. cruzi posibilita el desarrollo de nuevos fármacos para el tratamiento de la enfermedad de Chagas. En primer lugar, la tripanotiona reductasa reacciona con moléculas como el Nifurtimox y las o-naftoquinonas, que generan radicales libres del oxígeno (ver esas reacciones en las secciones correspondientes). Esos radicales contribuyen a la toxicidad de sus generadores (“reacciones suicidas”207). En segundo lugar, la tripanotiona reductasa forma complejos inactivos con moléculas como la mepacrina208 o los análogos de la espermidina209. Por último, el modelado molecular del centro activo de la tripanotiona reductasa ha permitido el diseño de potentes inhibidores como las fenotiazinas y las diazepinas210-214. Sin embargo, moléculas con gran afinidad por la tripanotiona reductasa del T. cruzi pueden tener efectos adversos en el paciente chagásico, entre ellos el daño mitocondrial que también ocurre en el T. cruzi215, la acción neuroléptica y efectos antioxidantes o pro-oxidante216, 217. La presencia de tripanotiona en el T. cruzi abre otra posibilidad terapéutica basada en la inhibición de la síntesis de tripanotiona. Esa inhibición se logra con derivados en la espermidina, como los fosfonatos y los fosfoamidatos218. Todavía no se conocen estudios que permitan valorar la utilidad clínica de esas moléculas.
La tripanotiona reductasa es un importante blanco para quimioterápicos antichagásica dada la exclusividad de su presencia en los tripanosomatídeos, especialmente en los patógenos para el hombre y los animales (T. cruzi, T. brucei sp). Se conoce la reacción de la tripanotiona con arsenicales trivalentes, como el melarsopol y el melarsen. La tripanotiona reductasa es inhibida por generadores de radicales libres del oxígeno, como los producidos por el Nifurtimox y las naftoquinonas, lo que contribuye a la explicación de la acción de esos fármacos. Algunos citostáticos (BCNU) son inhibidores de la tripanotiona reductasa. La obtención de tripanotiona reductasa pura, por ingeniería genética, ha permitido conocer su estructura tridimensional y en base a ese conocimiento se pueden diseñar moléculas capaces de unirse a la enzima con alta afinidad, inhibiendo su actividad. Dada las funciones de la tripanotiona en la desintoxicación de peróxidos generados por el metabolismo de fármacos en el T. cruzi, la inhibición de la reductasa permitiría daño celular irreversible y por lo tanto, la obtención de las moléculas inhibidoras es actualmente un objetivo racional prioritario para lograr fármacos específicos para el tratamiento de la enfermedad de Chagas.

J) Metodología de la investigación quimioterápica

Como epílogo de esta revisión parece oportuno una referencia a la metodología mas adecuada para obtener fármacos para el tratamiento y la prevención de la enfermedad de Chagas. El método tradicional, que se puede definir como “método empírico” fue creado y aplicado por P. Ehrlich, el fundador de la quimioterapia, a fines del siglo pasado. Consiste en ensayar un gran número de moléculas orgánicas sobre el agente patógeno in vivo219. Tuvo algunos éxitos notables, como los arsenicales trivalentes contra la Spirochaeta pallida (Treponera pallidum), agente causal de la sífilis, pero fracasó en el caso de las tripanomiasis tropicales. Este método es complejo y costoso, pues requiere ensayar las presuntas moléculas activas en gran número de animales de experimentación (ratas, ratones, monos, etc.). Por otra parte, requiere la síntesis y/o el ensayo de muchas moléculas orgánicas para reconocer a la mas activa. El método moderno, al que se puede denominar “método racional”, consiste en identificar un blanco molecular en el organismo patógeno que correlacione con una función esencial para ese organismo220, 221. Ese blanco puede ser una macromolécula (DNA, RNA, proteínas), una enzima o un receptor. Objetivos reconocidos en el T. cruzi para desarrollar nuevos fármacos antichagásicos son (entre paréntesis, moléculas guía) los siguientes220: 1) la enzima tripanotiona reductasa, (Nifurtimox, Benznidazole); 2) la enzima nucleosido fosforil transferasa (pirazol pirimidina); 3) la enzima purina-fosforibosil transferasa (Allopurinol) y la enzima C14 D24, 25 esterol demetilasa (azoles). A esos blancos se pueden agregar las cisteína-proteasa cuyos inhibi-dores específicos son los péptidos o seudo péptidos ligados a reactivos de tioles. El conocimiento siempre creciente de la estructura de numerosas macromoléculas y el análisis cristalográfico por rayos X de esas moléculas y sus complejos así como la disponibilidad de computadoras con alta capacidad para procesar datos y reproducirlos gráficamente, ha permitido obtener valiosa información sobre posibles agentes terapéuticos que se suelen denominar “moléculas guías” y también optimizar la información sobre moléculas conocidas. El “modelado molecular” para caracterizar ligandos específicos para proteínas o receptores, requiere: a) el conocimiento de la estructura tridimensional de la proteína; b) la determinación de la complementaridad del ligando con la subregión, sitio o área activa del receptor, en función de formas moleculares, hidrofobicidad, puentes de hidrógeno, cargas electrostáticas y los campos de fuerza221. Sin embargo, media un largo proceso entre los hallazgos moleculares y la producción industrial de un nuevo fármaco. Un inhibidor enzimático muy promisor puede ser tóxico, teratogénico, metabolicamente inestable, difícil de sintetizar o excesivamente costoso para la industria farmacéutica. La producción de drogas para poblaciones relativamente pequeñas o de bajo nivel económico, es desechada o postergada, lo que ha llevado a considerar como “drogas huérfanas” a las destinadas al tratamiento de la enfermedad de Chagas.

Agradecimientos: Este trabajo fue realizado con financiamiento de CEDIQUIFA (Argentina), Swedish Agency for Research with Developing Countries-SAREC (Estocolmo-Suecia) a través de la Profesora M. Paulino de la Facultad de Química de la Universidad de la República (Montevideo-Uruguay) y la Fundación Alberto J. Roemmers (Argentina). MG Gutiérrez y MAE Verón prestaron eficaz ayuda técnica.

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TABLA 4.— Efectos de inhibidores de cisteína-proteasas (cruzipaina o cruzein) sobre el T. cruzi

Autores Efecto

Bontempi y col. (1984) Presencia de cruzipaína en T. cruzi124.
Ashall y col. (1990) Flurometil cetona péptidos ligados inhiben la multiplicación del T. cruzi125
Meirelles y col. (1992) Previenen la invasión de las células del huésped y detienen el desarrollo intracelular del T. cruzi126 Harth y col. (1993) Detienen la multiplicación intracelular y la transmisión intercelular del T. cruzi127
McKerrow y col. (1995) Constituyen un modelo para drogas antiparasitarias resultantes del diseño molecular128.
Engel y col. (1998) Curan la infección chagásica experimental129.
Engel y col. (1998) Alteran la estructura y la función del complejo de Golgi en el T. cruzi128
TABLA 1.– Indices terapéuticos del Nifurtimox y el Benzmidazol en la enfermedad de Chagas

Fármaco Forma Xenodiagnóstico
clínica de la negativo en pacientes
enfermedad tratados (%)

Nifurtimox Aguda 38a; 50b; 81c; 60d; 53e
Crónica 100e; 97f; 85g; 96h; 100i;40j;33k
Benzmidazol Aguda 87n
Crónica 93n; 83o

Datos informado por: a Rassi; b Prata; c Cerisola; d Cerisola; e Ferreira; f Ejden; g Meekelt; h Scherone; i Rabinovich; j Cerisola; k Neves da Silva; l Ferreira; m Prata; n Barclay y o Galleano según Storino y Milei (Ref. 3).

TABLA 3.– Efectos del Allopurinol y pirazolopirimidinas sobre el T. cruzi

Compuesto Autores Efectos

Allopurinol Marr y col. (1978) Forma nucleótidos y se incorpora al RNA. Toxicidad in vitro; inhibe el crecimiento del T. cruzi in vitro106.
Allopurinol Avila y Avila (1981) Modelo murino: reduce la parasitemia y prolonga la supervivencia. Inhibe el crecimiento del T. cruzi in vitro107. Allopurinol Berens y col. (1982) Forma seudo nucleótidos e inhibe el crecimiento en cultivos (tripo- y epimastigotes)108.
Pirazol pirimidina Marr y Berens (1983) Erradica la infección en cultivo de células109.
4-Aminopirazol Avila y col. (1983) Modelo murino: reduce de la parasitemia y prolonga de la pirimidina supervivencia. Inhibe el crecimiento in vitro110.
Pirazol pirimidina Berens y col. (1984) Ensayo en diferentes cepas de T. cruzi in vitro e in vivo: ribósidos inhiben el crecimiento111.
Allopurinol y pirazol Avila y col. (1984) Cepas susceptibles y cepas resistentes de T. cruzi112.
pirimidinas
Allopurinol Croft y Neal (1985) Modelo murino: prolonga la supervivencia; no cura la ribósido;Formicina B infección113.
Bases púricas Guimaraes y Gutteridge (1986) Inhibición del transporte de purinas en T. cruzi114.
Bases púricas Guimaraes y Gutteridge (1987) Inhibición del transporte en T. cruzi115.
Pirazol pirimidina- Avila y col. (1987) Ribosidos análogos del allopurinol ribósidos; inhiben el ribósidos; Formicina B crecimiento del T. cruzi in vitro. La Formicina B inhibe in vitro e in vivo116.
Guanina- y Avila y col. (1987) Modelo murino: prolongan el tiempo de supervivencia. La guanosina- ribósidos Formicina B es activa117.
Pirazol pirimidina- Avila y Avila (1987) Transporte defectuoso en tripanosomas resistentes118.
ribósidos
Bases pirimidínicas Gonzalez y col. (1988) Inhiben el crecimiento del T. cruzi in vitro119.
Hipoxantina Van Buren y col. (1988) Inhibición del transporte en tripomastigotes de T. cruzi por Nifurtimox o Benzmidazole120.
Allopurinol Gallerano y col. (1991) Efectos discordantes en chagásicos crónicos121.
Zidovidina y otros Nakajima-Shimae (1996) Inhiben el crecimiento del T. cruzi in vitro122.
ribósidos
Análogos de bases Eakin y col. (1997) Inhibe la hipoxantina-ribosil transferasa; los sustituyentes en 6 púricas y 8 de la purina son críticos123.
Fig. 1.– Estructura del Nifurtimox.
Fig. 2.– Estructura del Benzmidazole.
Fig. 3.– Daño al DNA cinetoplasto del T. cruzi por el Nifurtimox. Experimento A: epimastigotes con DNA marcado con [3H]-timidina se incubaron durante 3 hr en medio de cultivo sin o con Nifurtimox en las concentraciones indicadas en la Figura. Terminada la incubación se extrajo el DNA y se analizó por electroforesis. Las fracciones aisladas (numeradas según la abscisa), se caracterizaron por su radiactividad. Experimento B: los epimastigotes preincubados con Nifurtimox según A, se lavaron con medio de cultivo fresco, se reincubaron durante 24 hr con el mismo medio y se determió la radiactividad del DNA como en el experimento A. Los picos de las curvas indican la fragmentación del DNA. Condiciones experimentales según Goijman y col.59,60.

Fig. 4.– Estructura del Miconazole.
Fig. 5.– Estructura de Ketoconazole.
Fig. 6.– Inhibición del crecimiento del T. cruzi por la o-naftoquinona CG 8-935. Condiciones experimentales según Molina Portela y col.144,145. Los números indican la concentración µM de quinona.
Fig. 7.– Degradación del DNA, RNA y proteínas de T. cruzi por la ß-lapachona. Epimastigotes incubados con [3H]-timidina, [3H]-uridina y [3H]-leucina se lavaron con medio de cultivo fresco y se reincubaron con ß-lapachona a la concentración indicada en la Figura. La radiactividad residual en los epimastigotes se midió a los tiempos indicados en la abscisa. Condiciones experimentales según Goijman y Stoppani144.

Fig. 8.– Estructura de la tripanotiona.

Fig. 9.– Función metabólica antioxidante de la tripanotiona reductasa (TR) y la tripanotiona peroxidasa (TP): T(SH)2 y T(S)2, dihidrotripanotiona y tripanotiona disulfuro; la diamide impide la conversión no-fisiológica de T(SH)2 en T(S)2. Según Referencia 203.
TABLA 2.— Efectos de Azoles sobre la multiplicación y la síntesis de ergosterol en T. cruzi

Compuesto Autores Efectos

Anfotericina B Abitbol y col. (1964) Reduce la parasitemia in vitro; puede tener actividad terapéutica en pacientes chagásicos (fase aguda)87.
Miconazole Docampo y col. (1981) Inhibe la multiplicación del T. cruzi in vitro. Disminuye el ergosterol88.
Econazole Docampo y col. (1981) Inhibe la multiplicación del T. cruzi in vitro. Disminuye el ergosterol88.
Ketoconazole McCabe y col. (1984;1987) Inhibe la multiplicación intracelular, previene la infección y cura parasitologicamente al ratón89,90.
Ketoconazole Beach y col. (1986) Inhibe la síntesis de esteroles91.
Ketoconazole Urbina y col. (1988) Altera la permeabilidad de las membranas y disminuye la síntesis de esteroles en T. cruzi92.
Ketoconazole y Terbinafina Lagardi y col. (1990) Produce alteraciones estructurales; disminuye la síntesis de ergosterol93
Ketoconazole, Terbinafina Maldonado y col. (1993) Inhiben la multiplicación del T. cruzi in vitro y la síntesis de y Lovastation esteroles. Modelo murino: reduce la parasitemia. La combinación de los tres fármacos puede tener utilidad terapéutica94.
Ketoconazole y Lovastatina Brener y col. (1993) No cura infección chagásica crónica95.
Anfotericina B De Castro y col. (1993) Efectos diferentes en amastigotes, tripomastigotes y epimastigotes96.
Sinefungina Avila y col. (1993) Inhibe la multiplicación del T. cruzi in vitro97
Ketoconazole y Provastatina Urbina y col. (1995) Inhibe la síntesis de esteroles en T. cruzi98.
D0870 Urbina y col. (1996) Modelo murino: reduce la parasitemia; prolonga la supervivencia100.
Triazoles Kolting y Hitchock (1997) Inhibidores del crecimiento del T. cruzi; Review 101.
Itraconazole y Allopurinol Abt y col. (1998) No curan la cardiopatía chagásica en todos los pacientes tratados99.